ВПЛИВ БІСФЕНОЛУ А ТА ПРОБІОТИКОВМІСНОГО КОРМУ НА ОКРЕМІ ПОКАЗНИКИ CARASSIUS GIBELIO BLOCH
Ключові слова:
Carassius gibelio Bloch, бісфенол А, пробіотики, еритроцити, лейкоцити, фагоцитарна активністьАнотація
Одним із найпоширеніших полютантів водойм є бісфенол А (BPA) – пластиковий мономер, що використовується для синтезу полікарбонатних пластмас, епоксидних смол і термопаперу (Barboza L. et. al., 2020). BPA потрапляє в прісноводні та морські екосистеми внаслідок вимивання з композитів на основі BPA, також зі скидами вод виробничих підприємств, очисних споруд та сміттєзвалищ. BPA характеризується низьким потенціалом накопичування в прісноводних середовищах, нетривалим періодом напіврозпаду в аеробних умовах, проте через безперервність потрапляння складає серйозну проблему (Wu N. C., Seebacher F., 2020). Шляхи потрапляння BPA в організм риби – різноманітні: через травний тракт, зябра, шкіру. Чисельні дослідження показали несприятливий вплив BPA на поведінкові та морфо-фізіологічні параметри риб, включаючи модель плавання, координацію рухів, апетит, порушення функціонування багатьох систем (ендокринної, репродуктивної, нервової).
Попередити негативні ефекти полютанта можна через профілактичне застосування засобів, що сприяють посиленню загальної реактивності організму. У цьому сенсі нашу увагу привернули пробіотики – мікроорганізми, що виявляють стимулюючий вплив на розвиток індигенної мікрофлори, володіють високим антагоністичним, синтетичним, імуномодулюючим, регуляторним потенціалом. Нами досліджувався вплив бісфенолу А та пробіотичних мікроорганізмів Lactobacillus сasei, введених у складі корму, на окремі показники Carassius gibelio Bloch (загальні поведінкові реакції, певні морфо-фізіологічні параметри, якісно-кількісну характеристику еритроцитів та лейкоцитів). Дослідження здійснювали після 15-денної акліматизації риб у акваріумах за температури води 14оС, відповідного режиму аерації та 16-годинного фотоперіоду.
Встановлено, що 96-годинна дія бісфенолу A, концентрацією 1,5 мг/л, викликає потемніння шкірних покривів, посилене слизовиділення, нехарактерну рухову діяльність, появу незвичних морфотипів еритроцитів, незначне збільшення кількості лейкоцитів, зниження показника фагоцитарної активності Carassius gibelio Bloch. Профілактичне введення пробіотичних культур у складі корму сприяло корекції поведінкових реакцій та окремих гематологічних показників.
Посилання
Barboza L. G. A., Cunha S. C., Monteiro C. et al. Bisphenol A and its analogs in muscle and liver of fish from the North East Atlantic Ocean in relation to microplastic contamination. Exposure and risk to human consumers. Journal of Hazardous Materials. 2020; 393. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2020.122419
Wu N. C., Seebacher F. Effect of the plastic pollutant bisphenol A on the biology of aquatic organisms: a meta-analysis. Global Change Biology. 2020; 26 (7): 3821–3833. https://doi.org/10.1111/gcb.15127
Repossi F., Farabegoli F., Gazzotti T. et.al. Bisphenol A in edible part of seafood. Ital J Food Saf. 2016; 5(2): 5666. doi: 10.4081/ijfs.2016.5666
Bhandari R. K., Deem S. L., Holliday D. K. et. al. Effects of the environmental estrogenic contami-nants bisphenol A and 17α-ethinyl estradiol on sexu-al development and adult behaviors in aquatic wild-life species. Gen Comp Endocrinol. 2015; 214: 195-219. doi: 10.1016/j.ygcen.2014.09.014.
Sun S.-X., Zhang Y.-N., Lu D.-L. et.al. Concentration-dependent effects of 17β-estradiol and bisphenol A on lipid deposition, inflammation and antioxidant re-sponse in male zebrafish (Danio rerio). Chemosphere. 2019; 237. doi:10.1016/j.chemosphere.2019.124422
Afzal G., Ahmad H.S., Hussain R. et.al. Bisphenol A induces histopathological, hematobiochemical alter-ations, oxidative stress, and genotoxicity in common carp (Cyprinus carpio L.). Oxid Med Cell Longev. 2022. doi: 10.1155/2022/5450421.
Akram R., Iqbal R., Hussain R. et. al. Evaluation of oxidative stress, antioxidant enzymes and genotoxic potential of bisphenol A in fresh water bighead carp (Aristichthys nobils) fish at low concentrations. Envi-ronmental Pollution. 2021; 268. doi: 10.1016/j.envpol.2020.115896
Chauhan A., Singh R. Probiotics in aquaculture: a promising emerging alternative approach. Symbiosis. 2019; 77: 99–113 https://doi.org/10.1007/s13199-018-0580-1
Hoseinifar S.H., Yun-Zhang Sun Y.-Z., Wang A. et. al. Probiotics as means of diseases control in aqua-culture, a review of current knowledge and future perspectives. Front. Microbiol. Sec. Aquatic Micro-biology. 2018. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.02429
Hasan K.N., Banerjee G. Recent studies on probiot-ics as beneficial mediator in aquaculture: a review. The Journal of Basic and Applied Zoology. 2020; 81. https://doi.org/10.1186/s41936-020-00190-y
Pandey A.A., Tyagi A., Khairnar S. O. Oral feed-based administration of Lactobacillus plantarum enhances growth, haematological and immunological responses in Cyprinus carpio. Emerging Animal Species. 2022; 3. https://doi.org/10.1016/j.eas.2022.100003
Vasina L.M., Starikova V.O., Khuda L.V. Influence of probiotics, introduced in the composition of the feed substrate, in particular haematological indica-tors of Carassius gibelio Bloch. Biol. syst. 2022; 14 (1): 29-32 https://doi.org/10.31861/biosystems2022.01.029
Lawrence M.J., Raby G.D., Teffer A.K. et al. Best practices for non-lethal blood sampling of fish via the caudal vasculature. J Fish Biol. 2020; 97(1): 4-15. doi: 10.1111/jfb.14339
Simpson D. W., Roth R., Loose L. D. A rapid, inex-pensive and easily quantified assay for phagocytosis and microbicidal activity of macrophages and neu-trophils. J Immunol Methods. 1979; 29(3): 221-226. doi: 10.1016/0022-1759(79)90309-0.
Frenzilli G., Martorell-Ribera J., Bernardeschi M. Bisphenol A and bisphenol S induce endocrine and chromosomal alterations in Brown Trout. Front. Endocrinol. 2021. https://doi.org/10.3389/fendo.2021.645519
Faheem M., Khaliq S., Lone K. P. Effect of bi-sphenol-a on serum biochemistry and liver function in the freshwater fish, Catla catla. Pak. Vet. J. 2019; 39(1): 1–5.
Huang Q., Liu Y., Chen Y. et.al. New insights into the metabolism and toxicity of bisphenol A on marine fish under long-term exposure. Environmental Pollution. 2018; 242 (Pt A): 914-921 DOI: 10.1016/j.envpol.2018.07.048
Akram R., R. Iqbal R., Hussain R. et al. Effects of bisphenol a on hematological, serum biochemical, and histopathological biomarkers in bighead carp (Aristichthys nobilis) under long-term exposure. Envi-ronmental Science and Pollution Research. 2022; 29(15): 21380-21395. doi: 10.1007/s11356-021-17329-1.
Diler Ö., Özil Ö., Nane İ. D. et.al. The Effects of Bisphenol A on Oxidative Stress, Antioxidant Defence, Histopathological Alterations and Lysozyme Activity in Narrow-Clawed Crayfish (Pontastacus leptodactylus). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2022; 22(10): TRJFAS19877. https://doi.org/10.4194/TRJFAS19877
Abdel-Tawwab M., Hamed H. S. Effect of bisphenol A toxicity on growth performance, biochemical variables, and oxidative stress biomarkers of Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.). Journal of Applied Ichthyology. 2018; 34 (5): 1117-1125 https://doi.org/10.1111/jai.13763
Mit C., Bado-Nilles A., Daniele G. et.al. The toxicokinetics of bisphenol A and its metabolites in fish elucidated by a PBTK model. Aquatic Toxicology. 2022;247.https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2022.106174
Dekant W., Völkel W. Human exposure to bisphenol A by biomonitoring: Methods, results and assessment of environmental exposures. Toxicology and Applied Pharmacology. 2008; 228: 114–134. doi: 10.1016/j.taap.2007.12.008.
Sharma P., Chadha P. Bisphenol A induced toxicity in blood cells of freshwater fish Channa punctatus after acute exposure. Saudi Journal of Biological Sciences. 2021; 28 (8): 4738-4750 https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2021.04.088
Maldonado Galdeano C., Cazorla S.I., Lemme Du-mit J.M. et al. Beneficial effects of probiotic con-sumption on the immune system. Ann Nutr Metab. 2019; 74: 115–124
