ВПЛИВ МОНОКУЛЬТУР ТА КОМБІНОВАНОГО ПРЕПАРАТУ ВОДОРОСТЕЙ НА ВИЖИВАНІСТЬ НАУПЛІЙ АРТЕМІЇ

Автор(и)

  • Oleksii Khudyi Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича http://orcid.org/0000-0001-5652-0900
  • Larysa Cheban Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича http://orcid.org/0000-0003-1454-0158
  • Lidiia Khuda Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича http://orcid.org/0000-0002-1098-7537
  • Yuliia Dzhuravets Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича
  • Tamara Shershen Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича
  • Yuliia Sumyk Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича
  • Olga Kushniryk Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича http://orcid.org/0000-0003-1001-6711
  • Maja Prusinska Інститут прісноводного рибництва імені Станіслава Саковіча в Ольштині

DOI:

https://doi.org/10.31861/biosystems2018.02.125

Ключові слова:

живий корм, артемія, мікроводорості, смертність, AlgaMac Protein Plus

Анотація

Утримання живих кормів в автогодівницях супроводжується голодуванням кормових організмів, внаслідок чого вони втрачають свою поживну цінність і, навіть, гинуть. Виходом з даної ситуації може бути сумісне утримання науплій артемії та їх кормових об’єктів – мікроводоростей. Відповідно було проаналізовано вплив монокультур трьох видів мікроводоростей (Desmodesmus armatus, Chlorella vulgaris, Dunaliella salina) та альгопрепарату AlgaMac Protein Plus на виживаність науплій артемії. Показано, що найнижчі показники смертності артемії спостерігали при її сумісному культивуванні з монокультурою хлорели. Використання альгопрепарату AlgaMac Protein Plus забезпечило істотне зниження показників смертності науплій артемії станом на 12 годину культивування. Розмір клітин досліджуваних видів водоростей є ключовим моментом при їх використанні як кормового об'єкта для артемії. Максимальний діаметр клітин хлорели досягає 10 мкм. Клітини мікроводорості D. armatus – одноядерні, автоспорові, кокоїдні. Їх розміри становлять 10-20 мкм в довжину; 3,5-8 мкм завширшки. Проте, десмодесмус окрім поодиноких клітин формує конгломерати по 2-4 клітини, що ускладнює його захоплення артемією. Водорості роду Dunaliella є елементом природної кормової бази для артемії у солоних та гіперсолоних озерах. Незважаючи на те, що дана водорость інтенсивно виїдається дорослою артемією, для її ранніх стадій Dunaliella залишається практично недоступною, оскільки має достатньо крупні клітини грушевидної форми довжиною до 25 мкм та шириною від 4 до 10 мкм. Початкова довжина науплій після викльову була близько 551 мкм. У контрольній групі через 24 год цей показник збільшився до 625 мкм. У дослідних –при насиченні Dunaliella salina розмір становив 617 мкм, Chlorella vulgaris – 611 мкм. Найменшими розмірами володіли науплії, які культивували сумісно з Desmodesmus armatus – 608 мкм.

Посилання

Akbary P, Hosseini SA, Imanpoor M, Sudagar M, Makhdomi NM. Comparison between live food and artificial diet on survival rate, growth and body chemical composition of Oncorhynchus mykiss larvae. Iran J Fish Sci. 2010; 9 (1): 19-32.

Akbary P, Hosseini SA, Imanpoor MR. Enrichment of Artemia nauplii with essential fatty acids and vitamin C: effect on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) larvae performance. Iran J Fish Sci. 2011; 10 (4): 557-569.

Becker EW. Micro-algae as a source of protein. Biotechnol Adv. 2007; 25 (2): 207-210. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2006.11.002

Brown, M. R. Nutritional value of microalgae for aquculture. In: Cruz-Suárez, L. E., Ricque-Marie, D., Tapia-Salazar, M., Gaxiola-Cortés, M. G., Simoes, N. (Eds.). Avances en Nutrición Acuícola VI. Memorias del VI Simposium Internacional de Nutrición Acuícola. 3 al 6 de Septiembre del 2002. Cancún, Quintana Roo, México. 2002: 281-292.

Brown MR, Blackburn SI. Live microalgae as feeds in aquaculture hatcheries. In: Advances in Aquaculture Hatchery Technology. Woodhead Publishing Limited; 2013:117-158e. https://doi.org/10.1533/9780857097460.1.117

Cheban L, Malischuk I, Marchenko M. Cultivating Desmodesmus armatus (Chod.) Hegew. in recirculating aquaculture systems (RAS) waste water. Arch Polish Fish. 2015; 23 (3): 155-162. https://doi.org/10.1515/aopf-2015-0018

Duong VT, Ahmed F, Thomas-Hall SR, Quigley S, Nowak E, Schenk PM. High Protein- and High Lipid-Producing Microalgae from Northern Australia as Potential Feedstock for Animal Feed and Biodiesel. Front Bioeng Biotechnol. 2015; 3. https://doi.org/10.3389/fbioe.2015.00053

González López CV, García M del CC, Fernández FGA, Bustos CS, Chisti Y, Sevilla JMF. Protein measurements of microalgal and cyanobacterial biomass. Bioresour Technol. 2010; 101 (19): 7587-7591. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2010.04.077

Heimann K, Huerlimann R. Microalgal Classification: Major Classes and Genera of Commercial Microalgal Species. In: Handbook of Marine Microalgae. Elsevier; 2015: 25-41. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-800776-1.00003-0

Hu Q, Sommerfeld M, Jarvis E, et al. Microalgal triacylglycerols as feedstocks for biofuel production: perspectives and advances. Plant J. 2008;54(4):621-639. https://doi.org/10.1111/j.1365-313X.2008.03492.x

Immanuel G. Bioencapsulation of Brine Shrimp Artemia Nauplii with Probionts and Their Resistance Against Vibrio Pathogens. J Fish Aquat Sci. 2016; 11 (4): 323-330. https://doi.org/10.3923/jfas.2016.323.330

Kadhar A, Kumar A, Ali J, John A. Studies on the Survival and Growth of Fry of Catla catla (Hamilton, 1922) Using Live Feed. J Mar Biol. 2014; 2014: 1-7. https://doi.org/10.1155/2014/842381

Lavens P, Sorgeloos P, eds. Manual on the Production and Use of Live Food for Aquaculture. Rome: FAO; 1996.

Makridis P, Vadstein O. Food size selectivity of Artemia franciscana at three developmental stages. J Plankton Res. 1999; 21 (11): 2191-2201. https://doi.org/10.1093/plankt/21.11.2191

Napiórkowska-Krzebietke A, Phytoplankton as a basic nutritional source in diets of fish. J Elem. 2017; 22 (3): 831-841. https://doi.org/10.5601/jelem.2016.21.4.1375

Ovie SI, Egborge ABM. The effect of different algal densities of Scenedesmus acuminatus on the population growth of Moina micrura Kurz (Crustacea: Anomopoda, Moinidae). Hydrobiologia. 2002;477:41-45. https://doi.org/10.1023/A:1021060510355

Simon M. Use of brine shrimp (artemia) in the feeding of sturgeon juveniles (Acipenseridae) (Review). Ribogospod. naukа Ukr. 2016; 2 (36): 97-122. https://doi.org/10.15407/fsu2016.02.097

Sorgeloos P, Dhert P, Candreva P. Use of the brine shrimp, Artemia spp., in marine fish larviculture. Aquaculture. 2001; 200 (1-2): 147-159. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00698-6

Tuchapska A, Krazhan S. Cultivation of cladoceran (Cladocera) for increasing provision of young-of-the-year carp (Cyprinus carpio) with natural feeds (Review). Ribogospod. naukа Ukr. 2014; 2 (28): 55-68. https://doi.org/10.15407/fsu2014.02.055

##submission.downloads##

Опубліковано

2018-12-28

Номер

Розділ

БІОХІМІЯ, БІОТЕХНОЛОГІЯ, МОЛЕКУЛЯРНА ГЕНЕТИКА