Особливості метаболічних перетворень гомоцистеїну та цистеїну в гепатоцитах щурів за умов нутрітивного дисбалансу

Автор(и)

  • Галина Копильчук Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича
  • Іванна Николайчук Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича
  • Юлія Калюжна Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича

DOI:

https://doi.org/10.31861/biosystems2020.02.141

Ключові слова:

гомоцистеїн, цистеїн, γ-глутамілцистеїнлігаза, цистеїндиоксигеназа, гепатоцити, аліментарна депривація протеїну, високосахарозний раціон

Анотація

Робота присвячена дослідженню концентрації гомоцистеїну в плазмі крові та активності ензимів катаболічних перетворень цистеїну – γ-глутамілцистеїнлігази та цистеїндиоксигенази у гепатоцитах щурів за умов споживання надмірного вмісту сахарози на тлі аліментарної депривації протеїну. Впродовж експерименту тварини споживали напівсинтетичний раціон відповідно до рекомендацій Американського інституту нутрієнтології за принципом парного харчування з урахуванням кількості харчового протеїну та сахарози в перерахунку на кілограм дієти. Концентрацію гомоцистеїну в зразках плазми крові визначали імунохімічним методом із електрохемілюмінесцентною детекцією (ECLIA). Рівень цистеїну оцінювали колориметричним методом при взаємодії з кислотним нінгідриновим реагентом. Активність γ-глутамілцистеїнлігази визначали за вмістом неорганічного фосфору (Рі) внаслідок гідролізу АТР в реакційній суміші. Активність цистеїндиоксигенази досліджували за зменшенням вмісту цистеїну в реакційній суміші. Встановлено, що споживання тваринами високосахарозного раціону супроводжується підвищенням концентрації гомоцистеїну в плазмі крові на 57 % порівняно з контролем, тоді як надходження надлишку даного вуглеводу за умов нестачі протеїну призводить до розвитку гіпогомоцистеїнемії (знижується на 43 % порівняно зі значеннями контрольної групи тварин). Підвищений рівень гомоцистеїну в плазмі крові при споживанні надлишку сахарози можна розглядати як прогностичний маркер функціональних порушень шляху транссульфування в печінці та використовувати в діагностиці гепатопатологій. Оскільки за умов споживання високосахарозного раціону в клітинах печінки відбувається зростання вмісту цистеїну та активності γ-глутамілцистеїнсинтетази – ключового ензиму синтезу глутатіону, що, ймовірно, спрямовано на підтримання внутрішньоклітинних резервів даного трипептиду. Отримані нами дані щодо виникнення гіпогомоцистеїнемії за умов споживання надмірної кількості легкодоступного вуглеводу на тлі нестачі харчового протеїну висвітлюють прогалини в розумінні кореляції між обмінними процесами метіоніну, гомоцистеїну та цистеїну в печінці. При надмірному споживанні сахарози на тлі протеїнової недостатності ключовим чинником зниження активності γ-глутамілцистеїнсинтетази (на 36 %) та субстрату даної реакції – цистеїну – можна розглядати нестачу екзогенного протеїну, оскільки зменшується не лише кількість надходження даної амінокислоти, а й порушується її синтез із метіоніну. Водночас максимальне підвищення цистеїндиоксигеназної активності в гепатоцитах щурів за умов споживання високосахарозного/низькопротеїнового раціону на тлі зниження γ-ГЦС активності вказує на утилізацією надлишку цистеїну з утворенням таурину та сульфатів.

Посилання

Zhloba A.A., Subbotina T.F. Evaluation of homocysteine binding with a fraction of plasma proteins associated with vascular remodeling. Arterial hypertension. 2013; 19 (2): 184–188. (in Russian)

Kopylchuk G. P., Buchkovska I. M., Borschovetska N. L., Chopyk N. V. The activity of glutathione synthesis and conjugation enzymes in rat hepatocytes under conditions of low-protein diet and acute liver injury. Biolohichni systemy. 2014; 6(1): 10–15. (in Ukrainian)

Kopylchuk Н. P., Buchkovska I. M., Nikolaev R. O. Content of protein fractions of blood plasma in animals under the conditions of protein deficiency. Biolohichni systemy. 2015; 7(3): 16–20.

Kopylchuk G. P., Buchkovska I. M., Ostrovska Y. K. Features transsulfuration pathway of homocysteine in hepatocytes rat under the conditions of protein deficiency. Biolohichni systemy. 2015; 7(2): P. 156–162.

Nechyporuk V. M., Korda М. М. Metabolism of cysteine in experimental hyper- and hypothyroidism in rats. Medical and Сlinical Сhemistry. 2017; 19(4): 32–40. https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2017.v0.i4.8433

Obolenskaya M. Yu., Rodriges R. R., Martsenyuk O. P. Folate-related processes in human placenta: gene expression, aminothiols, proliferation and apoptosis. Ukr. Biochem. J. 2011; 83(1): 5–17.

Petrenko A. Yu., Sukach A. N., Roslyakov A. D. Isolation of rat iiepatocytes by a non-enzymatic method: detoxicative and respiratory activities. Biochemistry. 1991; 56(9): 1647–1650. (in Russian)

Prystupa L. N., Grek A. V., Ataman Y. O. Clinical significanse of homocysteine in atherosclerotic process (literature rewiev). Visnyk SumDU. Seriya «Medycyna».2012; 1: 55–61. (in Ukrainian)

Burchfield J. G, Kebede M. A., Meoli Ch. C., Stöckli J., Whitworth P. T., Wright A. L., Hoffman N. J., Minard A. Y., Ma X., Krycer J. R., Nelson M. E., Tan Sh.-X., Yau B., Thomas K. C., Wee N. Y., Khor E.-Ch., Enriquez R. F., Vissel B., Biden T. J., Baldock P. A., Hoehn K. L., Cantley J., Cooney G., James D. E., Fazakerley D. J. High dietary fat and sucrose results in an extensive and time-dependent deterioration in health of multiple physiological systems in mice. J Biol Chem. 2018; 293(15): 5731–5745. https://doi.org/10.1074/jbc.RA117.000808

DiNicolantonio J. J., Bhutani J., O’Keefe J. H. Added sugars drive chronic kidney disease and its consequences: A comprehensive review. J. Insulin Resistance. 2016; 1: 1–13. https://doi.org/10.4102/jir.v1i1.3

Djuric D. M. Editorial: Sulfur-Containing Amino Acids in Cardiovascular and Neural Physiology, Pathophysiology and Pharmacology: An Overview and Update. Curr Med Chem. 2018; 25(3): 322–323. https://doi.org/10.2174/092986732503180130142900

Ellacott K., Morton G. J., Woods S. C., Tso P., Schwartz M. W. Assessment of feeding behavior in laboratory mice. Cell Metab. 2010; 12(1): 10–17. https://doi.org/10.1016/j.cmet.2010.06.001

Fernandes-Lima F., Monte T. L. Nascimento F. A., Gregório B. M. Short Exposure to a High-Sucrose Diet and the First Hit of Nonalcoholic Fatty Liver Disease in Mice. Cells Tissues Organs. 2016; 201(6): 464–472. https://doi.org/10,1159/000446514

Gaitonde M. K. A spectrophotometric method for direct determination of cysteine in the presence of other naturally occuring amino acid. Biochem. J. 1967; 104(2): 627–633.

Hashimoto T., Shinohara Y., Hasegawa H. Homocysteine metabolism. Yakugaku Zasshi. 2007; 127(10): 1579-1592. https://doi.org/10.1248/yakushi.127.1579

Jakubowski H., Głowacki R. Chemical biology of homocysteine thiolactone and related metabolites. Adv. Clin. Chem. 2011; 55: Р. 81–103. https://doi.org/10.1016 / b978-0-12-387042-1.00005-8

Jung Y. S. Metabolism of Sulfur-Containing Amino Acids in the Liver: A Link between Hepatic Injury and Recovery. Biol Pharm Bull. 2015; 38(7): 971–974. https://doi.org/10.1248/bpb.b15-00244

Karmin O., Siow Y. L. Metabolic Imbalance of Homocysteine and Hydrogen Sulfide in Kidney Disease. Curr Med Chem. 2018; 25(3): 367–377. https://doi.org/10.2174/0929867324666170509145240

Kopylchuk H. P., Nykolaichuk I. M., Lylyk I. S. Indexes of citrulline metabolism in rat liver under the toxic injury against the background of alimentary protein deficiency. Ukr. Biochem. J. 2020; 92(1): 113–119. https://doi.org/10.15407/ubj92.01.113

Li L., Zhao Z., Xia J., Xin L., Chen Y., Yang S., Li K. A Long-Term High-Fat/High-Sucrose Diet Promotes Kidney Lipid Deposition and Causes Apoptosis and Glomerular Hypertrophy in Bama Minipigs. PLoS One. 2015; 10 (11): https://doi.org/10.1371 / journal.pone.0142884

Nieman K. M., Schalinske K. L. Insulin administration abrogates perturbation of methyl group and homocysteine metabolism in streptozotocin-treated type 1 diabetic rats. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2011; 301(3): 560-565. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00105.2011

Prabhu A., Sarcar B., Kahali S., Yuan Z. Johnson J., Adam K.-P., Kensicki E., Chinnaiyan P. Cysteine Catabolism: A Novel Metabolic Pathway Contributing to Glioblastoma Growth. Cancer Res. 2014; 74(3): 787-796. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-13-1423

Qureshi S. S., Gupta J. K., Goyal A., Narayan Yadav H. A novel approach in the management of hyperhomocysteinemia. Med Hypotheses. 2019; 129:109245. https://doi.org/10.1016/j.mehy.2019.109245

Rasool S., Geetha T., Broderick T. L., Babu J. R. High Fat With High Sucrose Diet Leads to Obesity and Induces Myodegeneration. Front Physiol. 2018; 9: 1054–1064. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.01054

Reeves P. G., Nielsen F. H., Fahey G. C. AIN-93 purified diets for laboratory rodents: final report of the American Institute of Nutrition ad hoc writing committee on the reformulation of the AIN-76A rodent diet. J Nutr. 1993; 123(11): 1939 – 1951. https://doi.org/10.1093/jn/123.11.1939

Sellmann C., Baumann A., Brandt A., Jin C.J., Nier A., Bergheim I. Oral Supplementation of Glutamine Attenuates the Progression of Nonalcoholic Steatohepatitis in C57BL/6J Mice. J. Nutr. 2017; 147(11): 2041–2049. https://doi.org/10.3945/jn.117.253815

Škovierová H., Vidomanová E., Mahmood S., Sopková J., Drgová A., Červeňová T., Halašová E., Lehotský J. The Molecular and Cellular Effect of Homocysteine Metabolism Imbalance on Human Health. Int J Mol Sci. 2016; 17(10): 1733. https://doi.org/10.3390/ijms17101733

Voloshchuk O. N., Kopylchuk G. P., Tazirova K. A. The Features of Energy Metabolism in Hepatocytes of Rats that Receive Diets with Different Nutrient Contents. Biophysics. 2020; 65(2): 268–271. https://doi.org/10.1134/S000635092002027X

##submission.downloads##

Опубліковано

2020-12-23

Номер

Розділ

БІОХІМІЯ, БІОТЕХНОЛОГІЯ, МОЛЕКУЛЯРНА ГЕНЕТИКА