Вікові особливості гемоцитарного складу Apis mellifera L. осінньої генерації
Ключові слова:
Apis mellifera, гемоцити, гемоцитарна формула, вікові зміниАнотація
Клітини гемолімфи – гемоцити – забезпечують клітинний імунітет бджіл. Успіх клітинної імунної відповіді залежить від кількості і типів гемоцитів. Метою нашого дослідження було оцінити гемоцитарний склад робочих особин Аpis melliferа L. залежно від віку. Експеримент проводили під час осінньо-зимового періоду, на робочих медоносних бджолах осінньої генерації, без ознак інфекційних захворювань. Вік бджіл становив 50–55, 70–75, 90–95 діб. З бджіл відбирали гемолімфу, виготовляли мазки, забарвлювали їх, мікроскопіювали. Розраховували гемоцитарну формулу. На мазках гемолімфи досліджених бджіл ідентифіковано прогемоцити, плазматоцити овальні і веретеноподібні, гранулоцити, проникні клітини, перехідні форми клітин (зустрічалися у невеликій кількості і не у всіх бджіл). В гемоцитарних формулах робочих бджіл 50–55-денного віку найменш чисельними серед гемоцитів є гранулоцити, наступними за кількістю – прогемоцити і проникні клітини. Найчисельнішими типами гемоцитів є плазматоцити овальні (їх кількість найвища) і плазматоцити веретеноподібні. У гемолімфі 70–75-денних бджіл нижчий рівень прогемоцитів і проникних клітин, натомість вищий вміст плазматоцитів веретеноподібних щодо клітинного складу гемолімфи особин 50–55-денного віку. В гемоцитарній формулі 90–95-денних бджіл вміст плазматоцитів веретеноподібних вірогідно вищий, а плазматоцитів овальних – нижчий порівняно з особинами 70–75-денного віку. Отже, зі збільшенням віку бджіл осінньої генерації змінюється відносний вміст всіх виявлених типів гемоцитів, окрім гранулоцитів: знижується вміст прогемоцитів, плазматоцитів овальних, проникних клітин, зростає вміст плазматоцитів веретеноподібних. Якісний склад та співвідношення гемоцитів досліджуваних робочих особин A. mellifera L. може бути викликаний віковими функціональними змінами в організмі бджіл під час ранньої зимівлі.
Посилання
Belousova GP, Yurova VP. Morfologiya gemotsitov rabochikh pchel pri razlichnoy patologii. Problemy leykoza i infektsionnykh zabolevaniy selskokhozyaystvennykh zhivotnykh. Moscow, 1988: 152–155. (In Russian).
Gaifullina LR, Saltykova ES, Matniyazov RT, Nikolenko AG. Optimal conditions for applying of probiotics as adaptogens based on the analysis of the honey bee immune status. Biomics. 2016; 8(2): 76–81. (In Russian)
Gayfullina LR, Saltyikova ES, Nikolenko AG. Razlichiya v formirovanii kletochnogo immunnogo otveta u raznyih podvidov pchel respubliki. Dark forest bee Apis mellifera mellifera L. of the Republic of Bashkortostan [Temnaya lesnaya pchela Apis mellifera mellifera L. respubliki Bashkortostan]. Ufa: Gilem, Bashkirskaya encilopedia, 2015: 308. (In Russian).
Zapolskikh OV. Morfologicheskiy i tsitokhimicheskiy analiz kletok gemolimfy rabochey pchely. Tsitologiya. 1976; 18(8): 956–963. (In Russian).
Kysterna OS., Harkava VV, Musiyenko OV. Osoblyvosti pidhotovky mazkiv hemolimfy bdzholy-imaho. The animal biology. 2014; 16(4): 118.http://doi.org/10.15407/animbiol16.04. (in Ukrainian).
Savchuk GG, Yazvovitska LS. Morphometric characteristics of hemocytes in worker bees Apis mellifera L. [Morfometrychna kharakterystyka hemotsytiv robochykh bdzhil Apis mellifera L.]. Odesa National University Herald. Biology. 2020; 25(2): 173–184. http://doi.org/10.18524/2077-1746.2020.2(47).218065.
Bordier C. Stress in honeybees (Apis mellifera) : physiological and behavioural modifications. Agricultural sciences. Université d’Avignon, 2017: 166. NNT: 2017AVIG0687.
Bryden J, Gill RJ, Mitton RAA, Raine NE, Jansen VAA. Chronic sublethal stress causes bee colony failure. Ecol. Lett. 2013; 16(12): 1463–1469.http://doi.org/10.1111/ele.12188.
Burritt NL, Foss N J, Neeno-Eckwall EC, et al. Sepsis and hemocyte loss in honey bees (Apis mellifera) infected with Serratia marcescens Strain Sicaria. PLOS ONE. 2016; 11(12). http://doi.org/10.1371/journal.pone.0167752.
El-Mohandes SS, Nafea EA, Fawzy AM. Effect of different feeding diets on the haemolymph of the newly emerged honeybee workers Apis mellifera L. Egypt. Acad. J. biolog. Sci. 2010; 3(1): 213–220. http://doi.org/10.21608/EAJBSA.2010.15257.
Gábor E, Cinege G, Csordás G, et al. Identification of reference markers for characterizing honey bee (Apis mellifera) hemocyte classes. Developmental and comparative immunology. 2020. Vol. 109. http://doi.org/10.1016/j.dci.2020.103701.
Gatschenberger H, Azzami K, Tautz J, Beier H. Antibacterial immune competence of honey bees (Apis mellifera) is adapted to different life stages and environmental risks. PLoS ONE. 2013; 8(6). http://doi.org/10.1371/journal.pone.0066415.
Hystad EM, Salmela H, Amdam GV, et al. Hemocyte-mediated phagocytosis differs between honey bee (Apis mellifera) worker castes. PLoS ONE. 2017; 12(9). http://doi.org/10.1371/journal.pone.0184108.
Kunc M, Dobeš P, Hurychová J, et al. The year of the honey bee (Apis mellifera L.) with respect to its physiology and immunity: a search for biochemical markers of longevity. Insects. 2019; 10(244). http://doi.org/10.3390/insects10080244.
Marringa WJ, Krueger MJ, Burritt NL, Burritt JB. Honey Bee Hemocyte Profiling by Flow Cytometry. PLoS ONE. 2014; 9(10). http://doi.org/10.1371/journal.pone.0108486.
Millanta F, Sagona S, Mazzei M, et al. Phenoloxidase activity and haemolymph cytology in honeybees challenged with a virus suspension (deformed wings virus DWV) or phosphate buffered suspension (PBS). Pathology. 2019; 49(2). http://doi.org/10.1590/0103-8478cr20180726.
Negri P, Maggi M, Szawarski N, Lamattina L, Eguaras M. Apis mellifera haemocytes in-vitro: What type of cells are they? Functional analysis before and after pupal metamorphosis. J. of Apicultural Research. 2014; 53(5): 576–589. http://doi.org/10.3896/IBRA.1.53.5.11.
Negri P, Maggi MD, Ramirez L. Abscisic acid enhances the immune response in Apis mellifera and contributes to the colony fitness. Apidologie. 2015; 46: 542–557. http://doi.org/10.1007/s13592-014-0345-7.
Potts SG., Biesmeijer JC, Kremen C, et al. Global pollinator declines: trends, impacts and drivers. Trends Ecol. Evol. 2010; 25: 345–353. http://doi.org/10.1016/j.tree.2010.01.007.
Raymann K, Coon KL, Shaffer Z, Salisbury S, Moran NA. Pathogenicity of Serratia marcescens Strains in honey bees. mBio. 2018; 9(5). http://doi.org/10.1128/mBio.01649-18.
Ribeiro C, Brehelin M. Insect haemocytes – what type of cell is that? Journal of Insect Physiology. 2006; 52: 417–429. http://doi.org/10.1016/j.jinsphys.2006.01.005.
Richardson RT, Ballinger MN, Qian F, Christman JW, Johnson RM. Morphological and functional characterization of honey bee, Apis mellifera, hemocyte cell communities. Apidologie. 2018; 49: 397–410. http://doi.org/10.1007/s13592-018-0566-2.
Salem MH, Gad AA, Ramadan HM. Magda HS, Abir AG, Hanan MR. Effect of Varroa destructor on different haemocyte count, total haemolymph protein on larvae, pupae and adults of Apis mellifera drones. Journal of the Egyptian Society of ToxicologyJ. Egypt. Soc. Toxicol. 2006; 35: 93–96.
Sapcaliu A, Pavel C, Savu V, et al. Biochemical and cytological investigations on haemolymph of Apis mellifera carpathica bee in stressful conditions. Bulletin UASVM Animal Science and Biotechnologies. 2010; 67(1–2): 313–320. http://doi.org/10.15835/buasvmcn-asb:67:1-2:5317.
Szymaś B, Jędruszuk A. The influence of different diets on haemocytes of adult worker honey bees, Apis mellifera. Apidologie. 2003; 34: 97–102. http://doi.org/10.1051/apido:2003012.
Wilson-Rich N, Dres ST, Starks PT. The ontogeny of immunity: development of innate immune strength in the honey bee (Apis mellifera). J. Insect Physiol. 2008; 54: 1392–1399. http://doi.org/10.1016/j.jinsphys.2008.07.016.
